بافت چربی مشتق شده از سلول های بنیادی برای ترمیم زخم قرنیه بعد از وجود آمدن ضایعات در قرنیه موش ها بوسیله لیزر

قیمت: 45,000 تومان

دانلود رایگان مقاله

خرید ترجمه مقاله

عنوان فارسی

بافت چربی مشتق شده از سلول های بنیادی برای ترمیم زخم قرنیه بعد از وجود آمدن ضایعات در قرنیه موش ها بوسیله لیزر

عنوان لاتین

Adipose Derived Stem Cells for Corneal Wound Healing after Laser Induced Corneal Lesions in Mice

هدف مطالعه ما ارزیابی تاثیرات بالینی سلول های بنیادی مشتق شده از بافت چربی در درمان زخم قرنیه ایجاد شده بوسیله لیزر در موش ها بوسیله مقایسه ترمیم اپتیلیالی، التهاب و تجزیه و تحلیل بافت شناسی بین درمان ها متفاوت است. ضایعات قرنیه ای در هر دو چشم ۴۰ موش بوسیله لیزر کراتکتومی فوتو ری اکتیو ایجاد شد. چشم ها بوسیله آزیترومایسین موضعی طی ۳ روز مورد درمان قرار گرفتند. موش ها به ۳ گروه درمانی شامل(N=20) گروه کنترل، سلول های بنیادی و سرم پایه ای بودند که درمان های موضعی ۳ بار در روز را برای ۵ روز متوالی دریافت کردند. ارزیابی های بیومیکروسکوپی و عکس های دیجیتال به منظور تجزیه و تحلیل وسیع فلؤرسنت مثبت نقص اپتیلیالی ، التهاب قرنیه و.... در طی ۳۰، ۴۵، ۷۸، ۱۰۰، ۱۷۲ ساعت صورت گرفت. تکنیک های ایمونومیتو شیمیایی دریافت های چشمی فیکس شده برای ارزیابی ترمیم قرنیه بوسیله نشانگر های Ki67، (-SMAα) E-Codhering مورد استفاده قرار گرفتند. نواحی ضایعات قرینه ای فلؤرسنت مثبت بطور واضحی در گروه سلول های بنیادی در روز اول، دوم و سوم کوچک تر بودند. گروهی که در فاز آغازین با Stem cell ها درمان شده بود ترمیم اپتیلیالی بهتر و سریع تری نسبت به گروه درمان شده با سرم داشتند. اطلاعات بافت شناسی مقایسه ای نشانه هایی از ترمیم سریع تر و بهتر قرنیه در اپتیلیوم ولایه های استورمایی در درمان با سلول های بنیادی داشت. همچنین در درمان با سلول های بنیادی لایه ها اپیتلیالی بیشتر و افزایش عملکرد ترمیم کننده های زخمKi67 ، E-Codherin و X-SMA دیده شد. مطالعه فواید بافت شناسی و بالینی اهمیت درمان موضعی ADSC را برای زخم قرینه در موش ها خاط نشان کرد.

The aim of our study was to assess the clinical effectiveness of topical adipose derived stem cell (ADSC) treatment in laser induced corneal wounds in mice by comparing epithelial repair, inflammation, and histological analysis between treatment arms. Corneal lesions were performed on both eyes of 40 mice by laser induced photorefractive keratectomy. All eyes were treated with topical azythromycin bid for three days. Mice were divided in three treatment groups (n = 20), which included: control, stem cells and basic serum; which received topical treatment three times daily for five consecutive days. Biomicroscope assessments and digital imaging were performed by two masked graders at 30, 54, 78, 100, and 172 h to analyze extent of fluorescein positive epithelial defect, corneal inflammation, etc. Immunohistochemical techniques were used in fixed eyes to assess corneal repair markers Ki67,  Smooth Muscle Actin (-SMA) and E-Cadherin. The fluorescein positive corneal lesion areas were significantly smaller in the stem cells group on days 1 (p < 0.05), 2 (p < 0.02) and 3. The stem cell treated group had slightly better and faster re-epithelization than the serum treated group in the initial phases. Comparative histological data showed signs of earlier and better corneal repair in epithelium and stromal layers in stem cell treated eyes, which showed more epithelial layers and enhanced wound healing performance of Ki67, E-Cadherin, and -SMA. Our study shows the potential clinical and histological advantages in the topical ADSC treatment for corneal lesions in mice.